Offerta Didattica

 

BIOLOGIA DELLA SALUTE DELLE TECNOLOGIE APPLICATE E DELLA NUTRIZIONE

BIOCHIMICA CLINICA E BIOLOGIA MOLECOLARE CLINICA

Classe di corso: LM-6 - Biologia
AA: 2022/2023
Sedi: MESSINA
SSDTAFtipologiafrequenzamoduli
BIO/12CaratterizzanteLiberaLiberaNo
CFUCFU LEZCFU LABCFU ESEOREORE LEZORE LABORE ESE
65104230120
Legenda
CFU: n. crediti dell’insegnamento
CFU LEZ: n. cfu di lezione in aula
CFU LAB: n. cfu di laboratorio
CFU ESE: n. cfu di esercitazione
FREQUENZA:Libera/Obbligatoria
MODULI:SI - L'insegnamento prevede la suddivisione in moduli, NO - non sono previsti moduli
ORE: n. ore programmate
ORE LEZ: n. ore programmate di lezione in aula
ORE LAB: n. ore programmate di laboratorio
ORE ESE: n. ore programmate di esercitazione
SSD:sigla del settore scientifico disciplinare dell’insegnamento
TAF:sigla della tipologia di attività formativa
TIPOLOGIA:LEZ - lezioni frontali, ESE - esercitazioni, LAB - laboratorio

Obiettivi Formativi

Conoscere i principii teorici e le principali metodiche di biochimica clinica e biologia molecolare clinica utili alla determinazione dei marcatori biochimici e molecolari dei processi fisiopatologici dovuti a eventi infiammatori, autoimmuni o ad una scorretta alimentazione. Acquisire conoscenze di base sulla diagnostica di laboratorio e molecolare è importante per tutti coloro che intendono utilizzare la loro laurea per l'inserimento nel mondo del lavoro verso la ricerca o l’ambito biomedico/biotecnologico

Metodi didattici

Lezioni frontali in aula con videoproiezione di presentazioni animate con programma Power Point preparate dalla docente. Esercitazioni di laboratorio su tecniche di biochimica e biologia molecolare inerenti l’attività di ricerca svolta

Prerequisiti

Conoscenze di base di biochimica, fisiologia e biologia molecolare

Verifiche dell'apprendimento

La verifica dell'apprendimento consisterà in un esame finale orale utile a dimostrare il livello di approfondimento ed elaborazione degli argomenti trattati durante il corso insieme alle competenze di linguaggio e di ragionamento degli studenti. La valutazione è espressa in trentesimi (voto minimo 18). Dalle esercitazioni di laboratorio si valuterà anche la capacità di interpretazione e discussione dei risultati ottenuti dopo lo svolgimento di un esperimento di ricerca

Programma del Corso

La diagnostica di laboratorio: prelievo, trattamento e conservazione dei materiali biologici; variabilità analitica e biologica e valori di riferimento; Tipologia di analisi e requisiti dell'attività diagnostica in laboratorio e il controllo di qualita’. Metodi immunochimici e spettrofotometrici in biochimica clinica. Biochimica clinica in vivo: Tecnica di spettroscopia di risonanza magnetica Diagnostica delle alterazioni del metabolismo glucidico e lipidico Marcatori biochimici delle patologie cardio- e cerebrovascolari (infarto del miocardio, ictus). Diagnostica ematologica e metodologie per il conteggio (es. citometria a flusso e a fluorescenza) Diagnostica dellealterazioni della funzionalità epatica. Diagnostica proteica, tecniche elettroforetiche e cromatografiche, western blot, applicazioni alla proteomica: elettroforesi 2D, spettrometria di massa, cromatografia liquida accoppiata a spettrometria di massa LC-MS Diagnostica delle alterazioni della funzionalità renale, dell'omeostasi elettrolitica e dell'equilibrio acido-base. Alterazioni del metabolismo di calcio e fosforo. Diagnostica oncologica. Marcatori biochimici delle disfunzioni endocrine e vitaminosi Diagnostica di laboratorio delle malattie autoimmuni (es. reumatiche, celiachia) Il laboratorio nella gravidanza Indagini di diagnostica molecolare clinica: diagnosi di suscettibilita’, precoce, di malattia, di portatore, prenatale e biopsia liquida tecniche diagnostiche molecolari cliniche: Trattamento dei campioni biologici per la purificazione, estrazione, amplificazione ed identificazione degli acidi nucleici (Isolamento DNA e southern blot, isolamento dell’RNA e Northern blot, Dot-blot, PCR, real time PCR), applicazione delle scienze omiche in laboratorio: genomica e studio dei polimorfismi genici mediante sequenziamento Sanger, NGS, PCR allele specifica, Analisi di restrizione (RFLP), Denaturing High-Performance Liquid Chromatography (dHPLC), Single Strand Conformation Polymorphism (SSCP), Denaturing Gradient Gel Electrophoresis (DGGE), MICROARRAY (CHIP), alterazioni cromosomiche mediante FISH e CGH array. trascrittomica: microarray per lo studio dell’espressione genica, RNA-Seq Analisi dell’espressione genica differenziale, epigenomica: Basi di epigenetica, Metilazione del DNA, Valutazione dello stato di metilazione, Pirosequenziamento, Concetti di metabolomica, nutrigenomica, farmacogenomica

Testi di riferimento: Biochimica Clinica M. Ciaccio, G. Lippi -Biochimica Clinica e Medicina di Laboratorio- Ed. EdiSES 2017, Antonozzi e Guletta Medicina di laboratorio Logica e patologia clinica Piccin 2019, Laposata Medicina di laboratorio La diagnosi di malattia nel laboratorio clinico Piccin 2012, Albi Biochimica clinica essenziale Zanichelli 2019, Maccarrone Metodologie biochimiche e biomolecolari Zanichelli 2019, Strachan, Goodship ,Chinnery Genetica e Genomica nelle scienze mediche Zanichelli 2016 Materiale fornito dalla docente

Elenco delle unità didattiche costituenti l'insegnamento

Docente: DANIELA IMPELLIZZERI

Orario di Ricevimento - DANIELA IMPELLIZZERI

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